通过在表达CD40配体(CD40L)的辐照单层细胞上培养CLL细胞,可以诱导CLL细胞增殖,使生长抑制研究成为可能,初步研究证实了其诱导增殖。PARP抑制剂对HRR功能障碍的细胞具有合成致死作用,ATM被认为在HRR通路中发挥作用。
在初步研究使用慢性淋巴细胞白血病4名患者的样本(包括ATM功能失调和del11q案例)增殖慢性淋巴细胞白血病细胞培养72小时的CD40L-expressing细胞暴露于他拉唑帕尼(0-10000nM)。细胞计数在96-168小时,(即72小时暴露)显示浓度抑制细胞生长。
虽然我们的数据并没有表明ATM缺陷与更高的PARP活性有关,但已有研究表明高PARP活性与HRR缺陷有关。为了研究PARP活性是否与HRR状态以及对他拉唑帕尼b的敏感性有关,进一步对3个PARP活性高、中、低以及内源PAR水平低或高的CLL样本进行刺激,使其在cd40l表达层增殖,和暴露于他拉唑帕尼(0-1000nM)在72年HR他拉唑帕尼接种时期(方法2)。
在同一细胞计数96-168小时的时段表现出深刻的抑制增长的所有浓度的他拉唑帕尼GI50值<25-30nM。尽管这些数据似乎表明ATM功能障碍对他拉唑帕尼有抗性,但由于暴露前时间的差异,不能直接比较方法1和方法2的数据。而在方法1中,200个样本(无功能ATM)的GI50值比191个样本(有功能ATM)高10倍。
为了进一步确定敏感性是否是HRR缺陷的结果,收集暴露于1000nM他拉唑帕尼或载体的细胞,并通过测量γH2AX和RAD51焦点确定HRR功能。≥2倍的γH2AX焦点的增加被认为是确认停滞/崩溃的复制叉和/或DSB已经产生。
如前所述,如果观察到RAD51灶增加≥2倍,则将细胞定义为HRR感受态细胞[20,21]。样品193和199产生可分析的结果。两个CLL样本均为HRR耐受。患者208也显示出RAD51灶的增加,表明HRR能力,但是染色太差,无法充分分析(数据未显示)。这表明即使是HRR感受性CLL细胞也对他拉唑帕尼(talazoparib)敏感。详情请扫码咨询:
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